操作流程：

1. 常规染色脱色方法

1.1 电泳结束后，取凝胶放入适量考马斯亮蓝染色液中，确保染色液可以充分覆盖凝胶。

1.2 置于水平摇床或侧摆摇床上缓慢摇动，室温染色1h 或更长时间。

注：具体的染色时间取决于凝胶的厚度和染色时的温度。凝胶较厚，温度较低，则染色时间宜适当延长。

凝胶较薄，温度较高，则染色时间可以适当缩短。通常染色至凝胶的颜色和染色液的颜色非常接近，在染

色液中几乎看不清凝胶时，可以认为已染色充分。

1.3 倒出染色液。染色液可以回收重复使用至少2-3 次。

1.4 加入适量考马斯亮蓝染色脱色液，确保脱色液可以充分覆盖凝胶。

1.5 置于水平摇床或侧摆摇床上缓慢摇动，室温脱色4-24h。期间更换脱色液2-4 次，直至蓝

色背景基本上全部被脱去，并且蛋白条带染色效果达到预期。通常蛋白条带在脱色1-2h 后

即可出现。

注：脱色时间过长也会导致蛋白条带的颜色变浅。

1.6 完成脱色后，可把凝胶保存在水中，用于后续的拍照等。保存在水中的凝胶会发生溶涨。

如需避免溶涨，可以把胶保存在含20%甘油的水中。长期保存可以制备干胶。

2. 快速染色脱色方法

2.1 电泳结束后，取胶放入适量考马斯亮蓝染色液中，微波炉加热至接近沸腾或刚刚沸腾，

立即停止加热。通常大于10％的胶比较坚韧，在煮沸时不易破损；对于小于10%的胶，宜

尽量避免煮沸，以免出现胶碎裂的情况。

2.2 随后在染色液温度较高的情况下，在室温摇床上摇动5-10min。

2.3 倒出染色液。染色液可以回收重复使用至少2-3 次。

2.4 加入适量考马斯亮蓝染色脱色液，确保染色液可以充分覆盖凝胶。

2.5 微波炉加热至接近沸腾或刚刚沸腾，立即停止加热。

2.6 随后在脱色液温度较高的情况下，在摇床上摇动5-10min。此时通常可以观察到比较清

楚的蛋白条带。

2.7 更换新鲜的脱色液，重复步骤5 和步骤6，直至蓝色背景基本上全部被脱去，蛋白条带

染色效果达到预期。

2.8 完成脱色后，可以把凝胶保存在水中，用于后续的拍照等。保存在水中的凝胶会发生溶

涨。如需避免溶涨，可以把胶保存在含20%甘油的水中。长期保存可以制备干胶。

温馨提示

为了您的自身安全，使用试剂前，请做好防护，如穿实验服，带手套等。